САНЭПИДРЕЖИМ в клинико-диагностических лабораториях КОНТРОЛЬ ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ ОЧИСТКИ КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА СТЕРИЛИЗАЦИИ...

Информация о документе:

Дата добавления: 07/04/2015 в 11:07
Количество просмотров: 652
Добавил(а): Джесика Перевощикова
Название файла: sanepidrezhim_v_kliniko-diagnosticheskih_laborator.doc
Размер файла: 89 кб
Рейтинг: 0, всего 0 оценок

САНЭПИДРЕЖИМ в клинико-диагностических лабораториях КОНТРОЛЬ ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ ОЧИСТКИ КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА СТЕРИЛИЗАЦИИ...

САНЭПИДРЕЖИМ

в клинико-диагностических лабораториях


Основные понятия и определения

Санитарно-противоэпидемический режим (санэпидрежим) – зависящий от профиля учреждения комплекс организационных, санитарно-профилактических и противоэпидемических мероприятий, препятствующих возникновению внутрибольничной инфекции.

Важным элементом санэпидрежима является соблюдение требований асептики и антисептики, а также регулярный контроль их выполнения.

Антисептика – комплекс лечебных и профилактических мероприятий, направленных на уничтожение или подавление роста и развития микроорганизмов.

Асептика – мероприятия, предупреждающие проникновение микроорганизмов в рану (или слизистые оболочки) при проведении лечебных или диагностических процедур.

Асептика и антисептика дополняют друг друга при решении задачи профилактики внутрибольничной инфекции. Под асептикой обычно подразумевается стерилизация инструментов и принадлежностей, контактирующих с раной или слизистыми оболочками. Антисептика предполагает использование физико-химических и биологических факторов с противомикробной активностью.


ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННАЯ ОЧИСТКА


Предстерилизационная очистка – следующий после дезинфекции этап обработки изделий.

Цель – удаление белковых, жировых, механических загрязнений, лекарственных препаратов.

Последовательность очистки:

1. Замачивание 15 минут при 50˚С в перекиси водорода с моющим средством типа «Лотос», «Прогресс 5гр, моющего средства + 80 мл. 6% пе6рекиси водорода довести до литра водой(в раковине, ванне, бачке и т.д.).

2. Мойка каждого изделия в теч.0,5 минут при помощи ерша или ватно-марлевого тампона.

3. Ополаскивание под проточной водой 10 минут (в ванне, раковине и т.д.).

4. Ополаскивание каждого изделия дистиллированной водой в теч.0,5 минут (бачок и т.д.);

5. Сушка горячим воздухом при 85˚С до полного исчезновения влаги (сушильный шкаф).

Моющий раствор годен до загрязнения (появления розовой окраски), но не более суток с момента изготовления.

Неизменный моющий раствор может подогреваться до 6 раз. В процессе мойки температура раствора не поддерживается.

Разъемные изделия обрабатываются только в разобранном виде.



КОНТРОЛЬ ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ ОЧИСТКИ


Обязательному контролю подлежит 1% одновременно обработанных изделий одного наименования (но не менее 3-5 единиц).

Азопирамовая проба: розово-сиреневое окрашивание при наличии крови, бурое – ржавчины или хлорсодержащих веществ.

Фенолфталеиновая проба: розовое окрашивание при наличии остатков моющих средств.

В случае положительной пробы вся партия подлежит повторной обработке.

Окрашивание, наступившее позже, чем через 1 мин., не учитывается.


КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА СТЕРИЛИЗАЦИИ


Для каждого режима паровой или воздушной стерилизации используются соответствующие тест-полоски «Винар» (индикаторы стерилизации ИС-180, ИС-160, ИС-132, ИС-120).

При сухожаровой стерилизации на каждый поднос укладывается 5 тест-полосок, при автоклавировании – по 3 в каждый бикс.

Если цвет хотя бы одной полоски светлее эталона, вся партия считается нестерильной.

Отработанные индикаторы подклеиваются в журнал учета стерилизации.

Правила взятия крови


Взятие крови проводится в резиновых перчатках 1.Достать из стерильного бикса ёмкости для стерильных ватных тампонов и стерильного пинцта, пинцет залить 6% перекисью водорода, во вторую ёмкость заложить 4 ватных тампонов- на одного пациента и залить 70% спиртом ,закрыть крышкой.

2.Первым ватным тампоном обработать перчатки. 3.Вторым ватным тампоном обрабатать кожу,одноразовым скарификатором проколоть палец.

4.Третьим сухим стерильным тампоном убрать остатки спирта. 5.Произвести забор крови. 6Удалить остатки сухим ватным тампоном. 7.Наложить на палец тампон смоченный 70% спиртом. Ватные шарики стерилизуют и хранят в упаковке из бумаги, указанной в ОСТ 42-21-2-85, в количестве 20-25 штук, капилляры – по 5-10 штук, скарификаторы – в закрытых конических пробирках (острием вниз) также по 5-10 штук.


Способы взятия крови:


  1. на индивидуальное стерильное предметное (часовое) стекло;

  2. в индивидуальные стерильные капилляры Сали непосредственно с поверхности кожи;

  3. в индивидуальные стерильные капилляры Панченко, предварительно промытые стерильным раствором цитрата натрия;

  4. в пластиковую пробирку с сухим антикоагулянтом (трилон Б).


Основные нормативные документы:


1. ОСТ 42-21-2-85

«Отраслевой стандарт стерилизации и дезинфекции изделий медицинского назначения. Методы, средства, режимы».

2. Приказ № 408 от 12.07.1989 МЗ СССР

«О мерах по снижению заболеваемости вирусными гепатитами в стране»

3. Приказ № 720 от 31.07.1978 МЗ СССР

Приложение 1. «Инструкция по организации санитарно-гигиенических мероприятий по профилактике внутрибольничных инфекций в ЛПУ (отделениях) хирургического профиля».

4. Приказ № 170 от 16.08. МЗ РФ

«О мерах по совершенствованию профилактики и лечения ВИЧ-инфекции в РФ»

5. Приказ № 172/124 от 25 мая 2001 г.

«Об организации медицинской помощи ВИЧ-инфицированным и больных СПИДом»

6. Приказ № 25/20 от 21.01.2003г.

«О совершенствовании дезинфекционно-стерилизационного режима»


На основе указанных документов разработаны:

  • «Инструкция по мерам профилактики распространения инфекционных заболеваний при работе в клинико-диагностических лабораториях ЛПУ» (утверждена МЗ СССР 17.01.1991г.);

  • «Методические указания по профилактике внутрибольничных инфекций в лечебно-профилактических учреждениях» (утверждена МЗ УР и УР ЦГСЭН 17.04.1997г.).






САНИТАРНОЕ СОДЕРЖАНИЕ ПОМЕЩЕНИЙ


Влажная уборка помещений осуществляется не менее 1 раза в сутки (при необходимости чаще) с применением моющих и дезинфицирующих средств.

Еженедельно проводится расширенная (генеральная) уборка с тщательной обработкой дезсредствами пола, стен, рабочих столов, мебели и оборудования.

По окончании влажной уборки на 20 минут включаются бактерицидные лампы с последующим проветриванием помещения в течение 30 минут.

Ветошь подлежит дезинфекции в 3% хлорамине (0,1% Жавель-Солид) в течение 1 часа, затем прополаскивается и развешивается на соответствующем уборочном инвентаре (ведра, тазы, швабры и т.д.). Инвентарь должен иметь четкую маркировку с указанием помещений и видов уборочных работ.

В случае аварийной ситуации загрязненные биоматериалами поверхности дважды (с интервалом в 15 минут) протираются ветошью с 3% хлорамином или 0,2% р-р Жавель-Солида – 2 часа, или заливают 6% перекисью водорода на 1 час.

Если авария произошла на центрифуге, дезинфекционные мероприятия начинают через 30-40 минут (т.е. только после осаждения аэрозоля).

Все случаи аварийных ситуаций подлежат регистрации в журнале аварийных ситуаций.


РАБОТА СО СТЕРИЛЬНЫМЫ МАТЕРИАЛАМИ


Перед началом работы со стерильными инструментами персонал проверяет дату стерилизации (или срок использования на фабричной упаковке). В биксах стерильность обеспечивается в течение 3 суток.

Инструменты и принадлежности извлекаются из бикса (а также из упаковки, кисета и т.д.) стерильным пинцетом. Содержимое извлеченных упаковок используется в течение 6 часов. Кисеты (или крафт-пакеты), остающиеся в биксе, могут быть использованы на вторые и третьи сутки.

Ланцеты собираются в ёмкости с крышкой дезинфицирующим раствором и утилизируются в закрытом виде. Ватные шарики сразу после использования сбрасывают в специальную емкость с дезсредством Неотабс на 30 минут затем утилизируют в соответствии с установленным в учреждении порядком.

Многоразовые инструменты (капилляры, предметные стекла и т.д.) сразу после использования удаляют остатки биоматериала в тёмную ёмкость с делениями в соотношении 1Х2 0,02% Неотабса и биоматериала перемешать. экспозиция 1 час. Капилляры промыть в первой ёмкости с 1,5 % раствором Бэби-Дез Ультра затем заполняя каналы погрузить во вторую ёмкость с 1,5 % раствором Бэби-Дез Ультра на 30 минут. После чего прополоснуть водопроводной водой и отправить в Ц С О для предстерилизационной очистке и стерилизаци. Предметные стекла после микроскопии удаления иммерсионного масла погружают в 1,5 % раствор Бэби-Дез Ультра на 30 минут, затем промывают в проточной воде, выдерживают в дистиллированной воде, сушат отправляют в ЦСО для стерилизации.

Перчатки по окончании работы дезинфицируют в 0,2% р-ре Жавель-Солида 2 часа или в 6% перекиси водорода 1 час. Смена перчаток производится при их повреждении или после каждого 5-го пациента.

Марлевые маски меняются через 3 часа работы и обеззараживаются кипячением в течение 15 минут.



ОТРАСЛЕВОЙ СТАНДАРТ


Отраслевой стандарт – нормативный документ, обязательный для исполнения в соответствующих учреждениях. В частности, ОСТ 42-21-2-85 обязателен для исполнения в учреждениях, эксплуатирующих изделия медицинского назначения.

ОСТ 42-21-2-85 устанавливает методы, средства и режимы дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации.

На основе отраслевого стандарта разрабатываются инструкции применительно к конкретным изделиям или группам изделий с учетом их назначения и конструктивных особенностей.

Варианты отраслевого стандарта:

Отраслевой стандарт предусматривает три варианта дезинфекции химическим методом:

1 вариант: применяется при гнойных заболеваниях, кишечных и воздушно-капельных инфекциях, приказ № 720.

2 вариант: обязателен при туберкулезе, кандидозе, приказ №324

3 вариант: профилактика вирусных гепатитов ,СПИДа приказ №408.

4 вариант: анаэробные инфекции приказ №720


При 1 варианте используется:1 % хлорамин-30 мин. 3% перекись водорода-80 мин.0,1% Жавель-Солид-1час ,5% Аламинол – 1 час.

При 2 варианте используется 5% хлорамин-4часа, 3% перекись водорода-180мин. 5% Аламинол.-1час. 0.3% Ж-Солид-3часа.

При 3 варианте используется 3% хлорамин-1час, 6% перекись водорода – 1 час, 0,2% Жавель-Солид-2часа,5% Аламинол-1час.

При 4 варианте используется 6% перекись водорода – 1 час. 2% р-р соды кипячение –90 мин.-посуда,инструменты, 2% р-р соды кипячение-120 мин.-бельё.




АПТЕЧКА «Анти-СПИД»

Обязательный состав:


  1. 70˚ этиловый спирт – 100,0 (под обкатку)

  2. 5% спиртовый раствор йода – 10,0

3. стерильные ватные шарики – 1 упаковка

4защитные экраны (очки), маски,

стерильные перчатки

  1. антивирусный препарат – тимозид

(находится в п/покое стационара)



Аварийные мероприятия:



стерилизация


стерилизация – завершающий этап обработки изделий медицинского назначения.

Цель – уничтожение вегетативных и споровых форм патогенных и непатогенных микроорганизмов, на всех стадиях развития.

Стерилизации подлежат все изделия, контактирующие с кровью или соприкасающиеся с раневой поверхностью и слизистыми оболочками.

Методы стерилизации:

1. Паровой метод: автоклавирование в маркированных исправных биксах 20 минут при 132˚С и 2,0 атм. или 45 минут при 120˚С и 1,1 атм.;

2. Воздушный метод: в сухожаровом шкафу 60 минут при 180˚С или 150 минут при 160˚С (изделия равномерно распределяют на полках, обеспечивая свободную подачу воздуха).

3. Химический метод: погружение в 6% перекись водорода на 6 часов при 15-20˚С или на 3 часа при 50˚С в закрытых емкостях (затем изделия дважды погружают на 5 мин. в стерильную дистиллированную воду).

4. Газовый

5.Радиационный (одноразовые изделия). Выбор метода зависит от особенностей изделия. Стерилизации воздушным методом подлежат изделия из стекла и металла. Вата и перчатки обрабатываются в автоклаве. Химический метод применим для полимерных материалов, стекла и резины.


ДЕЗИНФЕКЦИЯ


Дезинфекции подлежат все изделия медицинского назначения немедленно после их применения.

Цель дезинфекции – профилактика заражения при проведении предстерилизационной очистки, либо других манипуляций с использованными изделиями медицинского назначения.

Методы дезинфекции:

1.Кипячение 30 минут при 98˚С в дист.воде или 15 минут в 2% растворе питьевой соды.

2. Паровой метод: 20 минут при 110˚С и 0,5 атм. (проводится в биксах в паровом стерилизаторе);

3. Воздушный метод: 45 минут при 120˚С (проводится в лотках в воздушном стерилизаторе);

4. Химический метод: 60 минут в 3% хлорамине или 3%,6% перекиси водорода при t не менее 18 градусов.

После использования внутренние каналы изделий промывают дез.раствором (5-10 мл) в первой емкости, затем (с заполненным каналом) полностью погружают в дез.раствор во вторую емкость для дезинфекции на определённое время.

До и после дезинфекции физическими методами (кипячение, паровой и воздушный методы) изделия промывают проточной водой.


ДЕЗИНФЕКЦИЯ БИОМАТЕРИАЛОВ И ЛАБОРАТОРНОЙ ПОСУДЫ


Остатки крови, мочи и других биологических жидкостей, а также промывные воды собирают в специальную маркированную емкость с крышкой и делениями и обеззараживают сухой хлорной известью в соотношении 1:5 (200 граммов хлорной извести на 1 литр биологической жидкости) в течение часа, после чего сливают в канализацию или заливают р-ром 0,2% Жавель-Солида 200 мл и доводят до 1 л. биологическим материалом, перемешивают и оставляют на 2 часа, затем утилизируют.

Кал, мокроту собирают в маркированную емкость с делениями, засыпают сухой хлорной известью (200,0 г) и доливают воду до метки 1 л, перемешивают и выдерживают 1 час или обеззараживают в 0,2% р-ре Жавель-Солида 2 часа.

Посуда, соприкасавшаяся с биологическими материалами (пробирки, банки для мочи, чашки Петри, флаконы, кюветы и т.д.) подлежит дезинфекции в 3% хлорамине или 6% перекиси водорода, 5% аламиноле, 0,1% Жавель-Солида в течение часа, затем промывается проточной водой до полного удаления дезинфектанта, ополаскивается и высушивается в сушильном шкафу.

Для обработки пластиковых кювет и пробирок используется 6% перекись водорода, 5% аламинол на 1 час.

С предметных стекол после микроскопии снимаются остатки иммерсионного масла, стекла кипятятся в мыльном растворе не менее 15 минут до полного удаления краски, затем промываются проточной водой и подсушиваются на воздухе или обеззараживаются в 6% перекиси водорода 1 час.



Приготовление моющего раствора


К 80 мл 6% перекиси водорода или к 160 мл 3% перекиси водорода добавляют 5 гр. синтетического моющего средства и доливают до 1 литра водой. Проведение генеральных уборок—6% перекисью водорода +0.5 гр. моющего средства или 0.015% Ж-Солид или 5% Аламинола . Орошаются стены,пол, потолок, столы. Кварцевание –1 час.Проветривани –15 мин. Протирание стерильной ветошью водопроводной водой.Кварцевание-30 мин. Проветривание –15 минут. Режим кварцевания в лаборатории 3 раза по 20 мин. С последующим проветриванием по 30 мин.

Профилактика

ВИЧ-инфекции и парентеральных вирусных гепатитов у медицинских работников


Медицинский персонал подвергается риску инфицирования через кровь такими жизнеугрожающими заболеваниями, как вирусные гепатиты и ВИЧ-инфекция.

Гепатит В относится к числу профессиональных заболеваний, отличается наклонностью к хронизации (5-10% у взрослых), развитию цирроза печени.

Гепатит С у медицинских работников, контактирующих с кровью пациентов, встречается значительно чаще, чем у практически здорового населения. Заболевание проявляется в стертой форме, выражена наклонность к хронизации (более 80%), возможно развитие цирроза печени и гепатоцеллюлярной карциномы.

ВИЧ-инфекция у медицинского персонала встречается нечасто. В мире известно около 100 профессиональных заражений. В России имеется 1 случай подозрения на профессиональное заболевание у медицинской сестры. Вопрос о признании профессионального заражения будет вероятнее всего решен в пользу медсестры.

Вероятность заражения ВИЧ-инфекцией медработника при уколе иглой, контаминированной кровью ВИЧ-инфицированного пациента, не высока и составляет в среднем от 0,2 до 0,5%. При попадании биологических жидкостей пациента на слизистые оболочки риск инфицирования составляет 0,1%.

Наибольшая вероятность заражения возникает при контакте с кровью, спермой, вагинальным секретом, спинномозговой жидкостью.

С увеличением числа ВИЧ-инфицированных и больных СПИДом растет число обращений данной категории больных за медицинской помощью. При контакте с больным следует исходить из предпосылки, что все поступающие потенциально ВИЧ-инфицированы и четко выполнять соответствующие меры профилактики.

Эффективная профилактика профессионального заражения ВИЧ-инфекцией возможна только при повседневном обучении и воспитании медицинского персонала. Это позволит медработникам снять необоснованные опасения, действовать грамотно и уверенно. В этом залог профессиональной безопасности медицинских работников.

ОСНОВНЫЕ ПРАВИЛА ПО ЗАЩИТЕ МЕДИЦИНСКОГО ПЕРСОНАЛА

ОТ ЗАРАЖЕНИЯ ПРИ ВЫПОЛНЕНИИ ИМИ СВОИХ ФУНКЦИОНАЛЬНЫХ ОБЯЗАННОСТЕЙ



● При выполнении манипуляций медицинский работник должен быть одет в халат, шапочку, сменную обувь, выходить в которой за пределы манипуляци